免疫荧光实验流程和常见问题！

免疫荧光技术是一种建立在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础之上的先进技术。它基于抗原抗体反应的原理，首先将已知的抗原或抗体标记上荧光标签，然后使用这些荧光标记的抗体（或抗原）作为探针，用来探查细胞或组织中的相应抗原（或抗体）。通过荧光显微镜，可以清晰可见荧光信号在细胞或组织中的位置，从而确定抗原或抗体的性质、分布以及通过定量技术（例如流式细胞仪）来测定其含量。这项技术为科学研究和医学诊断提供了强大的工具，使我们能够深入了解生物分子的相互作用和细胞内过程。

免疫荧光实验的主要步骤包括细胞片制备、固定及通透（或称为透化）、封闭、抗体孵育及荧光检测等。

（一）、细胞片制备（通俗的说法是细胞爬片）

免疫荧光实验的第一步是准备细胞片，而细胞片的质量对整个实验的成功起着至关重要的作用。这是因为，如果在细胞片制备过程中发生细胞掉落或损坏，那么实验将无法继续进行。这一步的关键在于精细处理玻片（Slides或Coverslips）并确保细胞保持活力。只有在这一步骤中细致入微地处理好细胞片，才能为后续的免疫荧光实验奠定坚实的基础。

具体操作步骤： 
细胞准备。对单层生长细胞，在传代培养时，将细胞接种到预先放置有处理过的盖玻片的培养皿中，待细胞接近长成单层后取出盖玻片，PBS洗两次；对悬浮生长细胞，取对数生长细胞，用PBS离心洗涤（1000rpm,5min）2次，用细胞离心甩片机制备细胞片或直接制备细胞涂片。

（二）、固定和通透

最关键的是，必须根据研究对象的抗原性质，明智地选择适用的固定方法。选用正确的固定剂和遵循适当的固定程序，对于获得出色的实验结果至关重要。这是确保实验成功的重要一环，因为固定是为了保持抗原的完整性，使其能够被有效地检测和分析。

具体操作步骤：
固定：根据需要选择适当的固定剂固定细胞。固定完毕后的细胞可置于含叠氮纳的PBS中4℃保存3个月。PBS洗涤3×5 min。

通透：使用交联剂（如多聚甲醛）固定后的细胞，一般需要在加入抗体孵育前，对细胞进行通透处理，以保证抗体能够到达抗原部位。选择通透剂应充分考虑抗原蛋白的性质。通透的时间一般在5-15min.通透后用PBS洗涤3×5 min。

（三）、封闭和抗体孵育

与其他方法（例如ELISA或Western Blot）的许多步骤相似，免疫荧光实验的主要区别在于其使用了荧光标记的抗体。因此，在进行该实验时，必须特别注意避光操作，以保持荧光信号的稳定性。此外，抗体浓度的选择在免疫荧光实验中可能具有更加关键的意义，因为它会直接影响到实验结果的质量和解释。

具体操作步骤：
封闭：使用封闭液对细胞进行封闭，时间一般为30min。
一抗结合：室温孵育1h或者4℃过夜。PBST漂洗3次，每次冲洗5min。
二抗结合：间接免疫荧光需要使用二抗。室温避光孵育1h.PBST漂洗3次，每次冲洗5min后，再用蒸馏水漂洗一次。

（四）、荧光检测

最后需要注意的是，标记好荧光的细胞片应尽早观察，或者用封片剂封片后在4℃或-20℃避光保存，以免因标记蛋白解离或荧光减弱而影响实验结果。

具体操作步骤：
封片及检测：滴加封片剂一滴，封片，荧光显微镜检查。

为进行免疫荧光实验，我们需要准备细胞样本，而这些细胞样本有多种来源和处理方式。

一种是可以使用直接附着在盖玻片上的贴壁细胞。这类细胞在培养时，只需将盖玻片放入培养皿中，细胞便会在上面黏附并生长。这种方法特别适用于附着性较好的细胞类型，因为可以减少后续漂洗步骤时细胞脱落的风险。

另一种选择是使用离心分离后的悬浮细胞，这些细胞需要制备成涂片。此外，还可以从体内组织中获得细胞悬液，然后通过离心制备成涂片，这适用于特定实验需求。

在选择细胞准备方式时，需根据具体实验的要求和所使用的细胞类型来决定，以确保最终获得可靠的免疫荧光实验结果。

1、无/弱染色烤片温度过高，推荐56℃-60℃1-2h；一抗是否适用固定液和石蜡切片，使用浓度是否过低，孵育是否时间过短等。

2、非特异性背景染色是否灭活内源性过氧化物酶；孵育过程中干片；抗原热修复过度。

3、染色过深一抗浓度过高；染色试浓度过高或孵育时间过长；染色剂浓度过高或孵育时间过长。