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免疫组化(IHC)技术:基于抗原与抗体的特异性结合机制,通过抗体标记组织细胞内的蛋白质,并利用化学反应显色,以精确识别这些蛋白质在组织细胞中的位置及其表达水平。
免疫组化结果解析1. 对照设置:正确解读染色结果需依赖阳性对照(验证表达的组织,用以排除假阴性)与阴性对照(验证不表达的组织,用以排除假阳性)。
2. 阳性判定:仅当抗原特异性地表达于细胞或组织的预定部位时,方可判定为阳性;非特异性部位的表达不得视为阳性。
3. 表达强度与数量:阳性表达存在强弱及数量的差异;即使仅个别细胞在抗原预期部位呈现阳性,亦应视为阳性表达。
4. 阳性标记色度:阳性着色强度受抗原含量、分布密度、标记方法及敏感性的影响。具体而言,抗原含量越高、分布越密集、标记方法越灵敏,阳性显色越强烈。颜色上,淡黄色代表弱阳性,棕黄色为中度阳性,而棕黑色则指示强阳性。
5. 细胞学标记特征:反映抗原在细胞内的精确定位与分布模式。具体类型如下:胞膜型:抗原沿细胞膜表面分布,形成一圈薄层的棕黄色颗粒环绕细胞。
胞核型:抗原定位于细胞核内,可均匀分布或集中于核膜下,部分呈小斑块状不规则排列。
胞浆型:抗原分布于细胞浆中,此类型最为常见,表现为弥漫性或局限性分布。
微绒毛型:主要见于腺癌细胞的微绒毛上。
复合型:可同时在细胞膜与细胞浆中表达。PART.2免疫组化结果呈现1. 放大观察:采用低倍镜、高倍镜或低倍镜结合高倍镜进行综合观察。
2. 数据统计:可选择不提供统计数据,或按视野进行统计,亦可基于生物学样本重复进行实验数据统计。
3. 图像采集:针对每个样本,采集x张低倍镜图像与y张高倍镜图像,总计x*y张图片。
4. 关键指标展示:明确蛋白位于细胞内或细胞外,评估蛋白表达的特异性,对比对照组与实验组的差异点。具体指标如下:阳性面积比例:计算阳性细胞面积占总面积的比例(针对细胞外定位),通过数量或比例体现差异。具体步骤包括分别测量阳性面积与总面积,采用颜色去卷积、设定图像阈值及测量值。
染色强度分析:测量阳性区域的平均光密度(OD)值(适用于细胞内外定位),以评估表达强度差异。操作包括筛选阳性区域(ROI),计算平均OD值,并利用IHC Toolbox进行背景去除与OD值校正。
阳性细胞比例:计算阳性细胞占总细胞数的比例(针对细胞内定位),反映细胞特异性及数量或比例差异。方法涉及阳性细胞与细胞核数目的计算,结合颜色去卷积与分析颗粒数。
阳性细胞密度:计算单位视野面积内的阳性细胞数(针对细胞内定位),同样体现细胞特异性及数量差异。此指标需测量阳性细胞数目与视野面积,利用Fiji等工具进行标尺与面积的测定。PART.3免疫组化结果评判方法01 积分评估法:该方法通过对切片中细胞的染色强度及阳性细胞范围进行评分,并将两者得分相乘得出最终结果。具体评分标准如下:染色强度:分为四级。无阳性着色(阴性)计0分;淡黄色(弱阳性)计1分;棕黄色(阳性)计2分;棕褐色(强阳性)计3分。
阳性细胞百分比:同样分为四级。≤25%计1分;26%-50%计2分;51%-75%计3分;>75%计4分。最终评分通过将上述两项得分相乘得出。
02 阳性细胞计数法:此方法用于评估某物质在组织中的存在及其数量,重点在于判断物质的数量而非表达强度。直接计数:在20倍镜下随机选取5个视野,计算阳性细胞数,并求取平均数作为该切片的阳性细胞数。
单位面积计数:另一种方法是统计20倍镜下的细胞数,然后除以镜下面积,得出细胞密度,单位表示为cells/mm²。 |
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