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在细胞生物学研究中,原代BMDM(骨髓来源巨噬细胞)的提取是一项基础且关键的技术。下面就为大家详细解读这一过程。
一、实验前准备
1. 实验动物与材料:选用体重在18 - 20g的C57BL - 6J小鼠,同时准备M - CSF、DMEM培养基、双抗、胎牛血清、75%乙醇溶液、PBS缓冲液以及0.22μm滤头。
2. 器械灭菌:将眼科剪、弯镊子和直镊子进行高压灭菌,确保实验器械无菌。
3. 材料预冷:提前一天将高糖DMEM、灭菌PBS、FBS、双抗放入四度冰箱预冷。
4. 溶液配制:准备50mL PBS(用于3 - 4只小鼠),含1%双抗的高糖DMEM,75%乙醇以及用滤头过滤的15mL左右1xPBS。
5. 物品紫外灭菌:准备充足的5mL、1mL注射器,提前盛有PBS的培养皿,1mL移液器及枪头,培养瓶,大量15mL和50mL离心管,泡沫板,若干针头和酒精棉球,进行紫外灭菌处理。
二、骨髓巨噬细胞的分离
取腿骨
1. 小鼠处死与消毒:用脊髓脱臼法处死小鼠,将其浸泡在75%乙醇中浸透消毒。
2. 骨骼获取:转移至超净工作台,固定小鼠上肢,从腹部中线剪开,取出双侧股骨和胫骨,并仔细剔除骨上附着的肌肉和组织,注意保持骨头完整性。
3. 骨骼消毒与清洗:将去皮去肉的股骨、胫骨放入含75%乙醇的培养皿浸泡5min,随后用冷PBS浸泡5min,洗去表面乙醇。
骨髓巨噬细胞提取和诱导
1. 骨髓吹出:将清洗后的股骨、胫骨两端剪断,用1 - 2mL注射器吸取PBS将骨髓吹至15mL离心管,反复吹洗3次,直至骨内无明显红色。
2. 红细胞裂解:1000rpm/min离心5min,弃上清。室温下加2mL裂红重悬细胞,轻弹管底,静置5min后加10mL PBS中和裂红。
3. 细胞清洗与重悬:1000rpm/min离心5min弃上清,PBS清洗两次,加入含M - CSF的完配混悬细胞沉淀,必要时重复操作减少细胞团块红色部分。
4. 培养基配制:为六孔板配制含10ng/ml M - CFS的培养基,六孔板每孔2mL,多配至12.5ml,加入12.5uL的10ug/mL的M - CSF。
5. 细胞重悬与计数:离心好的细胞弃去PBS,用12.5ml DMEM完全培养基重悬并反复吹打40下左右吹散细胞团,吸取10uL计数。
6. 铺板培养:根据计数结果,12孔板每孔种200万细胞。六孔板每孔先加2mL含10ng/mL M - CSF的DMEM完全培养基,再加入相应细胞数,置于37℃、5%的CO₂培养箱培养,记为第0天。
7. 换液培养:培养至第3天进行半量换液,补含10ng/mL M - CSF的DMEM完全培养基。之后每隔2 - 3天更换新鲜培养基,加培养基前用PBS清洗细胞,培养至第6天获得小鼠BMDM。 |
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