如果PCR用于免疫检测,灵敏度会发生怎样的变化?免疫PCR首次开发于1992年,其技术结合了ELISA(酶联免疫吸附测定)和PCR(聚合酶链反应),与传统ELISA相比,灵敏度得到了显著的提高。本推送主要介绍免疫PCR的相关技术原理及主要产品。
体外诊断主要有生化、免疫和分子等技术分类,其中免疫和分子各自有自己的标志物。之前的推送介绍了如何用免疫检测原理进行核酸分子的检测,其中以杂交捕获2作为典型例子进行说明。这种方法主要依靠抗体对DNA/RNA杂合体的特异性识别,尽管灵敏度不够,但使用简便,也适应HPV的检测需求,目前已经成为HPV检测的经典方法之一。
多年来一直依赖免疫检测技术,如蛋白质印迹、流式荧光免疫、ELISA和化学发光进行免疫检测,这些方法已经发展成为IVD免疫诊断最重要的技术支撑。但有些低丰富的蛋白仍然难以检测,特别是目前医学的发展,对高敏免疫检测的需求愈发严重。免疫PCR(immuno-PCR)是一种相对较新的方法,它的出现就是为了解决传统ELISA灵敏度不够的问题。通过将ELISA与PCR合并,免疫PCR提供了极高水平的测定灵敏度。
免疫PCR的历史
该技术最早报道于1992年Science的一篇文章。文章指出该技术可重复稳定地检测580个抗原分子,与传统方法比灵敏度提高了100000倍。目前,该技术已经成为最重要的超敏免疫检测技术之一(类似的技术之前有Digital ELISA-Simoa)。
在Sano等人进行的免疫PCR中,将牛血清白蛋白(BSA)固定在微量滴定板上,然后用附着有链霉亲和素蛋白A蛋白嵌合体的单克隆抗体进行检测。然后将生物素化的线性DNA加入孔中,通过PCR扩增,并通过琼脂糖凝胶电泳分析。随后,该方法发展成为利用qPCR进行定量的超敏检测,最低可在1毫升溶液中检测几个生物标志物。
免疫PCR测定的主要步骤如下图所示:
将特异于蛋白质靶标的抗体固定到容器表面
洗涤以去除未结合的抗体
添加样品
洗涤以去除未结合的样品
添加与DNA分子偶联的第二特异性抗体
洗涤去除未结合的抗体
DNA扩增和检测
目前,该技术已经有多种形式。其中最常见的是利用生物素标记的核酸分子进行信号扩增(图a)。免疫PCR难点之一在于抗体与寡核苷酸缀合的技术复杂性和稳定性。然而,抗体缀合技术的新发展意味着现在可以更有效地进行免疫PCR,特别是生物素标记核酸技术的成熟,使得这种技术逐步实现商业化。
免疫PCR的特点
ELISA是一种免疫测定,目前有三种不同类型的ELISA。直接ELISA,夹心ELISA和竞争ELISA。其中夹心法用于检测大分子,竞争法用于检测小分子。ELISA易于操作,运行相对便宜,并且可用于高通量筛选。
PCR是用于扩增特定DNA片段的技术。传统PCR扩增的产物DNA在凝胶上运行并用溴化乙锭染色。实时定量PCR(qPCR),将PCR产物的产生与荧光强度相关联,通过监控其荧光信号进行核酸检测与定量。qPCR非常灵敏,且比免疫检测具有更宽的动态范围。
免疫PCR本质上综合了两种方法的优点,只要有适当的抗体试剂,ELISA就可以检测到任何蛋白质,但它可能不够灵敏,无法鉴定低丰度的蛋白质。虽然PCR提供指数信号放大,但它不能直接用于抗原检测。免疫PCR通过抗体-寡核苷酸缀合物,利用PCR的方法放大信号,使免疫检测拥有了超高的灵敏度。
免疫PCR最主要的特点如下:
高度敏感:可以检测皮克,飞克量的分析物
低样品消耗:由于灵敏度高,检测通常只需要少量样品
通量高,多路复用
免疫PCR的主要平台
免疫PCR最成功的平台是由Chimera Biotec GmbH(德国多特蒙德的生物技术公司)开发的IMPERACER平台。Chimera Biotec GmbH总部位于德国,其主要开发和销售超敏蛋白检测平台,具有三大生物分析检测平台:ELISA、IMPERACER和SIMOA,三种技术平台有其各自优缺点。其中IMPERACER就是采用的immuno-PCR技术。
IMPERACER将抗体偶联DNA作为检测试剂,通过real-time qPCR扩增来确定检测结果。和传统ELISA相比,具有以下几点优势:灵敏度高1000倍,检测范围达到五个数量级,基质背景低,需要样本量少。
其公司在2007年在Nature Protocols上发表有immuno-PCR的相关指导文章。和Digital ELISA类似,目前这种高灵敏的免疫检测技术主要应用于各种细胞因子的检测。其它检测项目还有传染病、代谢疾病及神经病学等高灵敏生物标志物检测。
另一个平台是RayBiotech开发的Immuno-Quantitative ELISA (IQELISA™),但该系列产品主要面向科研市场,在临床上应用较少。