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在上篇中,我们深入盘点了多种标签蛋白亲和填料,但实验室里的“主角”远不止带标签的重组蛋白。书接上回!本篇将聚焦肝素、蓝色琼脂糖、离子交换、疏水层析等天然蛋白纯化常用填料,带你理清各类机制、应用策略和选型技巧,为复杂样本净化提供切实可行的解决方案!
在没有标签“导航”的情况下,纯化天然蛋白就像在没有路标的丛林中寻找宝藏。要想找到目标蛋白,就必须精准识别它的“物理化学特征”,依靠载量大、分辨率高、洗脱可调的层析策略逐步筛选提纯。
Section.01 天然蛋白纯化的核心逻辑: 依靠“自身属性”筛选
与标签蛋白不同,天然蛋白纯化不能依靠配基特异性,而是要“充分利用蛋白自身的特性”来设定纯化参数[1]。

Section.02 天然蛋白纯化的黄金三步法
Step 1:离子交换层析 (IEX) ——电荷筛选的“高速入口” 利用蛋白质在特定 pH 条件下所呈现的电荷状态 (带正电或负电),通过与相应带电的离子交换层析介质作用,实现蛋白质的选择性分离。






Step 2:疏水作用层析 (HIC) ——活性友好型纯化方式 高盐环境可增强蛋白质间的疏水相互作用,使目标蛋白结合至疏水层析介质;随后通过降低盐浓度的梯度洗脱,实现温和分离。



Step 3:分子筛层析 (SEC) ——最后的“抛光”步骤 利用蛋白的相对分子量差异分离目标蛋白与聚合物、降解产物等杂质。

Section.03 特殊亲和填料: 识别“天然结合特性”
某些天然蛋白具有特定结合能力,专属亲和填料才是对它们的“灵魂拷问”。
案例分析 
Section.04 天然蛋白纯化组合策略推荐
一招鲜吃遍天?不如多步组合出奇效,多级层析打出纯化“连环技”。
专业术语 IEX:Ion Exchange Chromatography,离子交换层析 HIC:Hydrophobic Interaction Chromatography,疏水层析
SEC:Size Exclusion Chromatography,分子筛层析/凝胶过滤
DEAE:Diethylaminoethyl,弱阴离子交换
Q:Quaternary Ammonium,强阴离子交换
CM:Carboxymethyl,弱阳离子交换
Phenyl,Butyl,Octyl:疏水层析介质
Superdex:Superdex Size Exclusion Resin,高分辨率分子筛介质
Affinity:Affinity Chromatography,亲和层析
Blue:Cibacron Blue,蓝色配基,模拟核苷酸结合位点
Sephacryl:Sephacryl Size Exclusion Resin,分子筛层析
Heparin:Heparin group,肝素层析
小贴士:天然蛋白纯化常见问题及解决策略 
天然蛋白的纯化,是科研人员“见招拆招”的实战修炼场。尽管没有放之四海而皆准的固定模板,但却有一套可循的系统化策略——从电荷性质、疏水性、分子量到天然的结合特性,搭配合适的层析填料和缓冲体系组合,依然能在“无标签”的局面下,理性破局,稳扎稳打。真正实现:不靠标签,照样把蛋白“撩”回来!
Section.05 小结
从肝素到离子交换,从疏水到多模式,天然蛋白的纯化之路充满挑战,但好填料能助力你事半功倍。感谢阅读,让我们继续探索更多高效、稳定、可放大的纯化解决方案,为每一份蛋白赋能!
#文末互动#:
你最常用的天然蛋白纯化策略是哪种?有哪些填料是你的“心头好”?评论区见,我们一起来聊聊!留言分享实验具体经验,点赞前五名送出【霸王茶姬-30元代金券】
 [1] Wu M, et al. Isolation and purification of immunoglobulin G from bovine colostrums by hydrophobic charge-induction chromatography. J Dairy Sci. 2015 May;98(5):2973-81. [2] Fekete S, et al. Hydrophobic interaction chromatography for the characterization of monoclonal antibodies and related products. J Pharm Biomed Anal. 2016 Oct 25;130:3-18. [3] Semwal S, et al. Small-angle X-ray scattering of engineered antigen-binding fragments: the case of glycosylated Fab from the Mannitou IgM antibody. Acta Crystallogr F Struct Biol Commun. 2025 Jan 1;81(Pt 1):19-29. [4] Koide T, et al. Human histidine-rich glycoprotein: simultaneous purification with antithrombin III and characterization of its gross structure. J Biochem. 1985 Nov;98(5):1191-200.  
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