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[分享] 求助 我作elisa老是失败?

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发表于 2024-9-16 08:29 | 显示全部楼层 |阅读模式

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我第一回做elisa实验 所以问题许多  我做的是间接竞争elisa    求各位大神帮帮我啊  !!我小白一个!!

第一是稀释的问题  稀释到底咋算?

我要稀释2w倍抗原

取1ul抗原加到1ml cb液里 配成了1ppm  然后取500ul加到9.5ml里 这就稀释成功了吧?  然后混匀包被

稀释4w 8w 16w 抗体 也是先配1ppm  然后取100ul 加到3.9mlpbs 里  混匀 取这个液体的2ml 加入2mlpbs 这就是8w  依次到16w

然后是标准品  标准品是2mg/ml  所以取  1ul加到2ml pbs里 就成了2ml  ppm  我需要配0.81ppb  就是将取2.43ul ppm定容到 3ml pbs里 然后取其中1ml 加入到2ml pbs  配成0.27ppb  这样一直配到0.01ppb

这样的稀释对吗?

第二是加样  请问怎么才能不手抖!!我觉得自己加样  真的很认真了  一个一个用手扶着加  几乎没有贴壁的液体  但是不知道为啥读完数总是有跳孔的

第三是所有步骤做完加ab液不显色是怎么回事  包括o标孔也不显色到底咋回事!!

第四ic50做完  是0.006??  最好是0.01--0.05  还有因为跳孔曲线出不来的  这到底咋回事?

第五  如何避免跳孔  怎么做好elisa!

原文地址:https://www.zhihu.com/question/43750541
楼主热帖
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发表于 2024-9-16 08:30 | 显示全部楼层
你好!ELISA失败可能与操作细节有关,下面针对你操作问题为您解析。
1. 稀释问题:
你的稀释方法总体上是正确的,但是有些细节需要调整:
抗原稀释:
1ul抗原加到1ml CB液中配成1ppm,这一步正确。
取500ul加到9.5ml中,你实际上稀释了20倍,而不是2万倍。为了稀释2万倍,你需要取5ul加到995ul中。
建议你使用移液器进行稀释,这样可以更准确地控制体积。
抗体稀释:
先配1ppm,然后取100ul加到3.9ml PBS中,你实际上稀释了40倍,而不是4万倍。
为了稀释4万倍,你需要取2.5ul加到997.5ul PBS中。
标准品稀释:
你的标准品稀释方法基本正确,但是建议你使用移液器进行操作,避免手动移液带来的误差。
2. 加样问题:
手抖是很多新手都会遇到的问题,建议你使用移液器进行加样,并使用吸头固定器来稳定移液器,减少手抖带来的误差。
另外,加样时应保持移液器垂直,避免贴壁,并确保吸头完全插入孔内。
确保你的实验台稳固,避免震动。
3. 无法显色问题:
首先,要确保你的试剂盒质量没有问题。如果试剂盒已经过期或者保存不当,就会导致显色失败。
其次,检查你的操作步骤是否正确,比如孵育时间、温度、洗涤步骤是否严格按照说明书操作。
还要检查你的抗体和抗原是否有效,以及是否已经失效。
如果所有步骤都正确,但还是无法显色,可能是你的洗涤步骤不彻底,导致孔内残留了过量的洗涤液,影响了显色的反应。
4. IC50问题:
IC50值是反映抗原与抗体结合能力的一个重要指标,通常在0.01-0.05 ppb之间。
你的IC50值为0.006 ppb,说明你的抗体与抗原的结合能力很强。
但是,由于你出现了跳孔现象,你的曲线可能无法准确地反映真实的IC50值。
5. 如何避免跳孔:
使用移液器进行加样,并使用吸头固定器来稳定移液器,减少手抖带来的误差。
确保你的实验台稳固,避免震动。
加样时应保持移液器垂直,避免贴壁,并确保吸头完全插入孔内。
洗涤时要注意,确保每个孔都被充分洗涤,并用吸水纸吸干孔内的残留液体。
建议:
仔细阅读ELISA试剂盒的说明书,并严格按照说明书进行操作。
准备好所有需要的材料和设备,确保实验环境干净整洁。
多练习,熟能生巧。
希望以上信息对你有所帮助,祝你顺利完成ELISA实验!如果还有疑问,欢迎前来交流!
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发表于 2024-9-16 08:30 | 显示全部楼层
ELISA实验是一种常用的生物化学实验技术,用于检测蛋白质、抗体、激素等生物分子。然而,在进行ELISA实验时,有时会出现不显色的情况,这可能是由于多种原因导致的。小编将和大家一起探讨ELISA实验不显色的潜在原因。


ELISA实验不显色可能是由于实验操作不当所致。在进行实验时,如果操作不严谨、步骤不准确或者试剂保存不当,都有可能导致实验结果不理想。例如,如果洗板步骤不充分或者底物溶液的pH值不合适,都会影响显色反应的进行。


实验样品的质量也可能是导致ELISA实验不显色的原因之一。如果样品质量不佳,可能会导致抗体与底物结合不充分,从而影响显色反应的进行。因此,在进行ELISA实验前,需要对样品进行严格的处理和质量控制,以确保实验结果的准确性。


实验条件的选择也可能影响ELISA实验的显色效果。例如,温度、湿度、光照等环境因素都可能对实验结果产生影响。因此,在进行实验时,需要对实验条件进行精确控制,以确保实验结果的可靠性。


综上所述,ELISA实验不显色的原因可能是多方面的,包括实验操作、样品质量和实验条件等多种因素。因此,在进行ELISA实验时,需要对实验过程进行严格控制,以确保实验结果的准确性和可靠性。同时,对于实验结果不理想的情况,需要进行仔细分析,找出问题所在,并及时进行调整和改进。
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发表于 2024-9-16 08:31 | 显示全部楼层
但看步骤全部是没问题的,很有可能问题是出在没有写明的地方
之前早期的时候有一个困惑我半天的问题,后面导师盯着我做,才发现移液枪的问题,之后改正后才正常成功了,微量实验里的移液器真的很重要,而且在ELISA这种微量实验里必须要注意细节,一点小差错就会前功尽弃,这个时候不要太慌神,调节好自己情绪再从头来过最后~
有什么关于ELISA的问题欢迎评论区提问,看到都会解答~
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发表于 2024-9-16 08:31 | 显示全部楼层
在板上打个格子试试。也可以做三重复
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发表于 2024-9-16 08:32 | 显示全部楼层
ELISA实验讲究一个自信

  • 你这个稀释步骤都挺对的,硬要抠字眼只能说稀释包被抗原的时候你没说混匀没。。但这种基本操作应该不会出问题。
  • 手抖正常,跳孔也正常,这俩之间没关系。一般来说微孔板在孵育的时候会上摇床振荡,所以加样只要加进去体积对就行了,没必要太紧张。实验中消除跳孔最简单的方法就是多做重复,多次独立重复实验假设结果符合正态分布,然后把离群点剔了就行。
  • 全部不显色的话结果信号值也会有问题,考虑标记抗体出了问题。ELISA的固相包被一般不会出问题,把抗体重新标记一下。
  • 结合3来看,你确定这个IC50的信号是有效可用的?看IC50之前先看OD值梯度吧,曲线不行的话ic50的信号也没啥用。
  • 跳孔在2里提到了一下,最简单的规避方法是多次重复实验之后剔除离群点,但是这个问题要深入研究的话就比较难了。如果你不做研发的话多说无用,除了多次重复实验之外建议多关注微孔板里的情况,比如说在摇床上如果振荡出了气泡要及时去掉。如果跳孔持续出现的话建议改良试验方案,比如洗板工艺都可以重新摸索,再进一步研究就涉及试剂的精密性优化了。
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