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[分享] 手把手教你了解免疫荧光,超全攻略,一文理清!

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发表于 2024-9-12 21:19 | 显示全部楼层 |阅读模式

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实验简介

免疫荧光通过抗体与示踪物质结合,利用抗原-抗体结合反应,进而对抗原所在的细胞或组织进行定性或定量。
实验原理

由于荧光素所发的荧光可在荧光显微镜下检出,荧光素受激发光的照射而发出明亮的荧光,可以看见荧光所在的细胞或组织,利用定量技术测定含量,从而可对抗原进行细胞定性和定位分析。
实验步骤


1、细胞爬片
用镊子夹住拨片的一角,在火上烘烤后,置于6孔板中,先加入少许细胞完全培养基(防止拨片在加入细胞悬液后漂浮),加入合适的细胞密度的细胞悬液,置于 37℃,5%CO2细胞培养箱中培养24h左右使细胞贴壁
2、细胞固定
从细胞培养箱中取出已爬好片的孔板,PBS洗涤3次,每次室温静置5 min,吸去剩余的 PBS,每孔中加入 4%多聚甲醛1ml,室温静置 20 min;
3、细胞通透处理
吸掉固定液,用PBS洗涤3次,每次静置5min,每孔加入0.5%Triton-100 溶液1ml,室温放置 20 min;(定位在细胞膜上的蛋白,这步省略)
4、封闭
吸掉孔板中的0.5%Triton-100溶液,PBS洗涤3次,每次静置5min,吸掉PIS,每孔中加入1m1%BSA封闭液封闭,室温封闭30min;

5、一抗处理
吸掉孔板中的封闭液,用1%BSA稀释相对应得一抗,可取出玻片(含有细胞面朝上),加入一抗,覆盖玻片表面(注意不要加多,利用液体的张力使一抗液体不溢出玻片外),将玻片放入湿盒中,4℃过夜;
6、二抗处理
从湿盒中取出玻片置于6孔板中,用P3ST洗涤3次,每次静置5min,用1%BSA稀释对应种属的二抗。加入二抗,盖玻片表面(注意不要加多,利用液体的张力使一抗液体不溢出玻片外),将玻片放入湿盒中,37℃孵育30min;(加入二抗起,所有操作均需避光)
7、核复染
将玻片咒于6孔板中,用PBST洗涤3次,每次静置5min,加入DAPI染液,空温避光孵育5~10min;
观察拍照:用PBST洗涤3次,每次静置5min,每孔加入PBS,尽快用荧光8、显微镜观察拍照。

注:1%BSA用PBS配制:PBST:0.02%Twecn-20加入到PBS中。

原文地址:https://zhuanlan.zhihu.com/p/715667005
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