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免疫组织化学技术:检测组织原位表达的肽类、激素、神经递质、细胞因子、受体、表面抗原等抗原性物质。
免疫 immuno- 抗原抗体的免疫反应
组织 histo- 检测组织中表达的抗原性分子
化学 chemistry 酶促/荧光可见反应
(一)组织和细胞标本的准备
1.组织标本的取材 —— 取材新鲜,固定及时,形态完好。
2. 细胞标本的准备
(1)活体细胞标本: 印片法、穿刺吸取法、沉淀法
(2)培养细胞标本:
① 细胞涂片: 将细胞制成悬液(10^6)涂在 涂有切片粘合剂的载玻片上,晾干后固定(细胞甩片)。
②细胞爬片: 将细胞直接培养在盖玻片上 将细胞直接培养在6孔或9孔板上。
3.固定
(1)保持形态:终止和抑制外源性和内源性酶活性,防止 组织细胞的死后变化,防止自溶和腐败,保持组织细胞的固有形态。
(2)保存抗原:使细胞内的蛋白质、脂肪、糖和酶等各种抗原成份转变成不溶性物质,以保持它原有的结构和定位与生活时相仿。
(3)硬化作用:固定剂兼有硬化作用、使组织硬化、增加组织硬度、便于制片。
(4)便于观察:使组织中的各种物质沉淀和凝固起来而产生不同的折射率,造成光学差异,以便染色后易于鉴别和观察;经过固定的组织能对染料产生不同的亲和力而着色清晰,便于辨认。
注意事项:
①防止脱片:玻片预处理(多聚赖氨酸)、温和操作。
②力求保持组织新鲜, 勿使其干燥, 尽快固定处理。
③组织块不易过大过厚,必须小于 2cm x 1.5cm x 0.3cm,尤其是组织块厚度须保持在0.3cm 以内。
④固定剂必须有足够的量,在体积上一般大于组织20倍。
⑤组织固定后, 应充分水洗,去除固定剂,以减少固定剂造成的人为假像。
(二)石蜡切片免疫组化染色实验步骤
1.石蜡切片脱蜡至水:(石蜡切片染色前应置 60℃ 1 小时)。
(1)二甲苯Ι、II,各 10 分钟。
(2)梯度酒精:100%,2 分钟→ 95%,2 分钟→ 80%,2 分钟→ 70%2 分钟。
(3)蒸馏水洗:5 分钟,2 次(置于摇床)。
2.过氧化氢封闭内源性过氧化物酶:3%H2O2,室温 10 分钟(避光)。
3.蒸馏水洗:5 分钟,2 次(置于摇床)。
4.抗原修复:根据待检测的抗原,选择适当的方法。
附:抗原修复液(10mM pH 6.0 枸橼酸钠缓冲液)的配制:
(1)储备液的配制:
A 液:枸橼酸三钠-2H2O 29.41g + 蒸馏水 1000ml。
B 液:枸橼酸 21g + 蒸馏水 1000ml。
(2)工作液的配制:A 液 82ml + B 液 18ml + 蒸馏水 900ml。
抗原修复的方法:
(1) 高压锅处理技术:枸橼酸钠缓冲液(10mM,PH6.0),淹没切片,盖 上锅盖,高
压锅内煮沸,上汽 3 分钟后缓慢冷却(可用自来水在高压锅外冲,以助冷却)。
(2) 微波处理技术:用塑料切片架,置于塑料或耐温玻璃容器内,枸橼酸钠缓冲液淹没切片,选择中高或高档,5 分钟;取出并补充已预热的枸橼酸钠缓冲液;再选择中高或高档,5 分钟.(最佳温度为92∼95℃)。
(3)酶消化处理:此略。
抗原修复的注意事项:
(1)组织不能干。
(2)选择抗原修复方法要因抗体而异。
(3)该方法主要用于 10%福尔马林固定、石蜡包埋组织。
(4)抗原修复后至 DAB 显色的过程中,均需用 PBS 缓冲液。
5.PBS:5 分钟,2 次(置于摇床)。
6.正常血清封闭:从染片缸中取出切片,擦净切片背面水分及切片正面组织
周围的水分(保持组织呈湿润状态),滴加正常山羊或兔血清(与第二抗体 同源动物血清)处理,37℃,15 分钟。
附:正常血清配制 (或按试剂盒规定的浓度配制):按 1:20 比例,用 PBS 配制,每张切片需要量按 50μl+5μl (10%抛洒量)计算。
7.滴加第一抗体:用滤纸吸去血清,不洗,直接滴加第一抗体,37℃ 2 小时
(也可置于 4℃冰箱过夜)。
8.PBS:5 分钟,2 次(置于摇床)。
9.滴加生物素化的二抗,37℃,40 分钟。
10.PBS:5 分钟,2 次(置于摇床)。
11.滴加三抗 (SAB 复合物),37℃,40 分钟。
12.PBS:5 分钟,2 次(置于摇床)。
13.DAB 显色,镜下观察,适时终止(自来水冲终止)。
附:DAB 的配制:
(1) 储 备 液 (DAB 25mg/ml) 的 配 制 :DAB 250mg + PBS 10ml , 待 完 全 溶 解 后 分 装 成1ml,100μl,50μl,20μl 等,-20℃,冻存。
(2)工作液:DAB 储备液 20μl + PBS 1000μl + 3% H2O2 5μl。
14.自来水(细水)充分冲洗。
15.苏木素复染,室温,30 秒,自来水冲洗。
16.自来水冲洗返蓝,15 分钟。
17.梯度酒精脱水:80%,2 分钟 → 95%,2 分钟 → 100%,2 次,5 分钟。
18.二甲苯透明:I,III(二甲苯)各 5 分钟
19.封片:加拿大树胶(或中性树胶)封片。
(三)细胞爬片的免疫组化染色
1. 取出细胞爬片,迅速置入冷丙酮固定 20 ∼30 分钟。
2. 蒸馏水浸泡 5 分钟,2 次。
3. 打孔液浸泡 5 分钟。
4. 蒸馏水浸泡 5 分钟,2 次。
5. 后接前述实验步骤的第 6 步(正常血清封闭)。
注:第 3、4 步仅用于检测细胞内抗原,检测细胞膜抗原时不用。
(四)冰冻切片的免疫组化染色
1. 新鲜组织立即在恒冷冰冻切片机内切片(也可-80℃保存),厚度为 5~6μm。
2. 载玻片可不打底,裱片后,立即用电吹风吹干。
3. 如不马上染色,可密封后-20℃保存。
4. 染色前用冷丙酮在 4℃固定 10-20 分钟。
5. PBS 洗 2 次,每次 5 分钟,(必要时应用 0.1%柠檬酸+0.1%triton 打孔)。
6. 3% H2O2 灭活内源性过氧化物酶,20 分钟,避光。
7. 用 PBS 洗 2 次,每次 5 分钟。
8. 接前面实验步骤第六步。
(五)切片的预处理
1. 洗衣粉液浸泡 30 分钟,冲洗,晾干。
2. 洗液 (含强酸、高锰酸钾等)浸泡 24 小时,冲洗,晾干。
3. APES(1:50 丙酮溶液) 10-20 秒(注意:不能用塑料容器及塑料切片架)。
4. 纯丙酮 I,约 10 秒;纯丙酮 II,约 5 秒。
5. 晾干或烤箱内烤干,备用。
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