细胞消化培养操作注意事项与方法分享

SHYaxin

传代培养（消化法）
一. 传代前准备
1、预热培养用液：把已经配制好的装有培养液、PBS液和胰蛋白酶的瓶子放入37℃水浴锅内预热。
2、用75％酒精擦拭经过紫外线照射的超净工作台和双手，严格进行无菌操作前的准备工作。
3、正确摆放使用的器械：保证足够的操作空间，不仅便于操作而且可减少污染。
4、点燃酒精灯：注意火焰适宜。
5、取出预热好的培养用液：取出已经预热好的培养用液，用酒精棉球擦拭好后方能放入超净台内。
6、从培养箱内取出细胞：注意取出细胞时要旋紧瓶盖，用酒精棉球擦拭显微镜的台面，再在镜下观察细胞。
7、打开瓶口：将各瓶口一一打开，同时要在酒精灯上烧口消毒。
注意事项：严格的无菌操作过程
二. 胰蛋白酶消化
1、加入消化液：小心吸出旧培养液，用PBS清洗（冲洗），加入适量消化液（胰蛋白酶液），注意消化液的量以盖住细胞最好，最佳消化温度是37℃。
2、显微镜下观察细胞：倒置显微镜下观察消化细胞，若胞质回缩，细胞之间不再连接成片，表明此时细胞消化适度。
3、吸弃消化液加入培养液：弃去胰蛋白酶液，注意更换吸管，加入新鲜的培养液。
胰蛋白酶是细胞培养中不可或缺的一种消化酶，传统的胰蛋白酶主要来源于猪或牛的胰脏，经分离纯化得到。在动物胰脏中，胰糜蛋白酶与胰蛋白酶的性质极其相似，提取纯化过程中二者较难分开，通常胰蛋白酶同时隐藏糜蛋白酶活性。针对来源于猪胰脏胰蛋白酶的缺点，上海雅心生物利用基因工程生产出重组胰蛋白酶，重组胰蛋白酶具有与动物源性胰蛋白酶相同的酶学性质，可替代胰蛋白酶使用，且有很多优势，无杂酶活性，无外源性或内源性病毒污染，无PMSF、EDTA等任何蛋白酶抑制剂。
注意事项：
适度消化：消化的时间受消化液的种类、配制时间、加入培养瓶中的量等诸多因素的影响，消化过程中应该注意培养细胞形态的变化，一旦胞质回缩，连接变松散，或有成片浮起的迹象就要立即终止消化。
附：EDTA（0.02％乙二胺四乙酸二钠）消化液配方：
EDTA 0.20g，NaCl 8.00g， KCl 0.20g， KH2PO4 0.02g， 葡萄糖 2.00g，0.5％酚红4ml，加入蒸馏水定容至1000ml。10磅20min高压灭菌，使用时调节PH值到7.4。注意EDTA不能被血清中和，使用后培养瓶要彻底清洗，否则再培养时细胞容易脱壁。
三. 吹打分散细胞
1、吹打制悬：用滴管将已经消化细胞吹打成细胞悬液。
2、吸细胞悬液入离心管：将细胞悬液吸入10ml离心管中。
3、平衡离心：平衡后将离心管放入台式离心机中，以1000转/分钟离心6-8分钟。
4、弃上清液，加入新培养液：弃去上清液，加入2ml培养液，用滴管轻轻吹打细胞制成细胞悬液。
四. 分装稀释细胞
1、分装：将细胞悬液吸出分装至2-3个培养瓶中，加入适量培养基旋紧瓶盖。
2、显微镜下观察细胞：倒置显微镜下观察细胞量，必要是计数。注意密度过小会影响传代细胞的生长，传代细胞的密度应该不低于5×105/ml。最后要做好标记。
五. 继续培养
用酒精棉球擦拭培养瓶，适当旋松瓶盖，放入CO2培养箱中继续培养。传代细胞2小时后开始贴附在瓶壁上。当生长细胞铺展面积占培养瓶底面积25％时为一个＋，占50％为＋＋，占75％时为＋＋＋
细胞复苏
一.准备工作
1、将水浴锅预热至37℃
2、用75％酒精擦拭紫外线照射30min的超净工作台台面。
3、在超净工作台中按次序摆放好消过毒的离心管、吸管、培养瓶等等。
二.取出冻存管
1、根据细胞冻存记录按标签找到所需细胞的编号。
2、从液氮罐中取出细胞盒，取出所需的细胞，同时核对管外的编号。
三.迅速解冻
1、迅速将冻存管投入到已经预热的水浴锅中迅速解冻，并要不断的摇动，使管中的液体迅速融化。
2、约1-2min后冻存管内液体完全溶解，取出用酒精棉球擦拭冻存管的外壁，再拿入超净台内。
四.制备细胞重悬液
1、离心（3000rpm,3min)后吸弃上清液。
2、向离心管内加入10ml培养液，吹打制成细胞悬液。
五.细胞计数
细胞浓度以5×105/ml为宜。
六.细胞培养
将复合细胞计数要求的细胞悬液分装入培养瓶内，将培养瓶放入37℃和5％CO2的培养箱内2-4小时（或者24-48小时）后换液继续培养培养，换液的时间由细胞情况而定。

细胞计数
当待测细胞悬液中细胞均匀分布时，通过测定一定体积悬液中的细胞的数目，即可换算出每毫升细胞悬液中细胞的细胞数目。
一.准备工作
取一瓶传代的细胞，按照《传代细胞培养（消化法）》中的传代方法繁殖细胞，待长成单层后以被使用。
二.细胞悬液制备
细胞悬液的制备方法是用0.25％的胰蛋白酶液消化、PBS液洗涤后，加入培养液（或Hanks液或PBS等平衡盐溶液），吹打制成待测细胞悬液。
三.细胞计数
1、盖好盖玻片：取一套血球计数板，将特制的盖玻片盖在血球计数槽上。
2、制备计数用的细胞悬液：用吸管吸5滴细胞悬液到一离心管中，加入5滴台盼蓝染液（0.4％）或苯胺黑，活细胞不会被染色，加入染液后就可以在显微镜下区别活细胞和死细胞。
3、将细胞悬液滴入计数板：将待测细胞悬液吹均匀，然后吸取少量悬液沿盖片边缘缓缓滴入，要保证盖片下充满悬液，注意盖片下不要有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中。
4、统计四个大格的细胞数：将血球计数板放于显微镜的低倍镜下观察，并移动计数板，当看到镜中出现计数方格后，数出四角的四个大铬（每个大格含有16个中铬）中没有被染液染上色的细胞数目。
5、计算原细胞悬液的细胞数:按照下面公式计算细胞密度：
（细胞悬液的细胞数）/ml＝ （ 四个大格子细胞数/4) ×2×104
说明：公式中除以4因为计数了4个大格的细胞数。
公式中乘以2因为细胞悬液于染液是1：1稀释。
公式中乘以104因为计数板中每一个大格的体积为：
1.0mm（长）×1.0mm（宽）×0.1mm（高）＝0.1mm3 而 1ml＝1000mm3
四.细胞计数要点
1、进行细胞计数时，要求悬液中细胞数目不低于104个/ml，如果细胞数目很少要进行离心再悬浮于少量培养液中；
2、要求细胞悬液中的细胞分散良好，否则影响计数准确性。
3、取样计数前，应充分混匀细胞悬液，尤其时多次取样计数时更要注意每次取样都要混匀，以求计数准确；
4、数细胞的原则是只数完整的细胞，若细胞聚集成团时，只按照一个细胞计算。如果细胞压在格线上时，则只计上线，不计下线，只计右线，不计左线。
5、操作时，注意盖片下不能有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中，否则要重新计数。