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qPCR实验中actin CT值出现差异的原因有很多,即使是使用相同的样本和引物,不同人操作也可能导致结果有所不同。你遇到的情况很常见,不用太担心,可以从以下几个方面逐一排查:
1. RNA提取和cDNA合成:
- RNA质量: 你的RNA提取质量可能不如师姐的,导致cDNA合成效率较低。
- 检查RNA完整性:使用琼脂糖凝胶电泳或Agilent 2100 Bioanalyzer评估RNA的完整性,确保28S和18S rRNA条带清晰,且28S rRNA亮度约为18S rRNA的两倍。
- 检查RNA纯度:使用NanoDrop等仪器测定RNA的A260/A280和A260/A230的值,确保RNA没有蛋白质、酚类或其他污染物的残留。
- cDNA合成效率: cDNA合成过程中,试剂的质量、操作手法、反应条件等都可能影响cDNA的产量和质量。
- 检查反转录酶和引物的质量:确保使用高质量的反转录酶和引物,并正确储存和使用。
- 优化反转录反应条件:根据所用试剂盒的说明书,优化反转录反应温度、时间等参数。
- 使用相同批次的试剂:尽量使用与师姐相同批次的试剂,以减少批次间差异的影响。
2. qPCR反应体系和操作:
- 加样准确性: qPCR反应体系的加样量非常微小,任何误差都可能导致CT值的变化。
- 使用校准过的移液器:确保使用校准过的移液器,并进行规范的操作。
- 避免气泡:加样过程中避免产生气泡,气泡会影响反应体积的准确性。
- 混匀充分:确保反应体系充分混匀,避免试剂分布不均。
- 反应条件: 反应条件的细微差异也可能导致CT值的变化。
- 检查PCR仪的性能:确保PCR仪的温度控制准确,并进行定期校准。
- 优化反应程序:根据所用试剂盒和引物的说明书,优化退火温度、延伸时间等参数。
- 试剂质量: qPCR试剂的质量对实验结果至关重要。
- 使用高质量的试剂:确保使用高质量的qPCR试剂,并正确储存和使用。
- 避免试剂污染:避免试剂受到污染,例如使用无菌的枪头和离心管。
3. 数据分析:
- 基线和阈值的设置: 基线和阈值的设置会影响CT值的计算。
- 正确设置基线和阈值:根据扩增曲线,选择合适的基线和阈值。
- 使用自动基线和阈值设置功能:如果软件有自动基线和阈值设置功能,可以尝试使用。
4. 其他因素:
- 移液器校准: 确保你使用的移液器与师姐使用的是同一台或经过校准,移液器的误差会导致加样量不准确。
- 耗材: 不同品牌的耗材也可能对qPCR反应有细微影响,尽量使用与师姐相同的耗材。
- 操作习惯: 每个人的操作习惯不同,例如混匀手法、离心力度等,都可能对实验结果产生影响。
建议:
- 与师姐详细交流: 详细了解师姐的实验步骤和操作细节,并观察她的操作过程,找出可能存在的差异。
- 重复实验: 重复进行几次实验,观察CT值的稳定性,排除偶然因素的影响。
- 设置平行样: 每次实验设置多个平行样,可以减少误差,提高实验结果的可靠性。
- 优化实验条件: 如果以上方法都不能解决问题,可以尝试优化实验条件,例如RNA提取方法、cDNA合成试剂盒、qPCR试剂盒、反应程序等。
希望以上建议能帮助你找到问题所在,祝你实验顺利! |
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