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PHOTON:一种实现亚细胞水平空间转录组学的新方法

2025-7-28 14:30| 编辑: 归去来兮| 查看: 457| 评论: 0|来源: 小桔灯网 | 作者:动力彩虹

摘要: 该方法结合了高分辨率成像和高通量测序技术

RNA在细胞内的定位与其功能密切相关。许多RNA物种被分配到不同的细胞器和亚细胞区域,进行储存、加工、翻译或降解。因此,RNA在亚细胞水平的空间分布对于理解RNA的功能和调控机制至关重要。然而,现有的方法大多存在局限性,如需要大量细胞输入、无法应用于稀有细胞类型、难以纯化所有亚细胞区域等。一种理想的RNA检测工具需要达到下面的目标:(1)能够捕获各种类型亚细胞区室中数千种内源性RNA物种的空间定位;(2)所需的细胞数量比现有方法少得多;3)不需要基因相关操作。


近日,杂志Nature communications上发表了一篇题为“Subcellular level spatial transcriptomics with PHOTON”的文章。文章针对上述挑战,开发了一种名为PHOTON的新方法,该方法结合了高分辨率成像和高通量测序技术,实现了亚细胞水平的空间转录组分析,可以在组织水平上捕获目标细胞类型的转录组,以及亚细胞区室内的RNA含量。

图片来源:Nature communications



主要内容





PHOTON方法概述


PHOTON方法主要分为四个步骤(如下图A):

(1)原位‌构建photocaged cDNA文库‌:定制的反转录(RT)引物,5'端通过光切割linker连接荧光团,并引入四个6-N-POM修饰的dT以及一个生物素偶联的dT。

(2)激光选择性释放cDNA分子‌:使用405nm激光选择性地照射ROI,使荧光团从RT引物上切割,同时恢复N-POM dT的碱基配对功能。

(3)‌样品消化和PCR手柄连接‌:细胞裂解后纯化核酸,并将PCR手柄连接到RT引物的5'端。这一连接步骤仅发生在经过光切割的5 '磷酸基团并且N-POM dTs也被释放的cDNA上。

(4)‌文库制备和测序‌:成功连接的cDNA通过生物素被富集,通过PCR扩增,并使用Illumina Nextera XT测序文库制备流程进行文库制备。最终产物在Illumina平台上进行测序。


PHOTON方法概述。图片来源:Nature communications





PHOTON方法的可行性验证


为了验证PHOTON方法的可行性,研究团队首先在培养的HeLa细胞中进行了测试。结果显示,当使用405nm激光照射细胞时,荧光强度显著下降了86.9%(图C),表明cDNA分子成功被光切割。进一步的分析显示,PHOTON库是从细胞RNA中生成的,且photocage机制在防止不需要的光切割方面非常有效(效率达99.1%)(图D)。此外,研究还评估了PHOTON的信号噪声比(SNR),发现即使在低激光功率下,即使只有0.5%的细胞被光切割,PHOTON的信号仍然高于噪声(信噪比> 1.2)。考虑到灵敏度、产率和PHOTON的特异性,作者最终选择了2.5 mW的激光功率和100µs的停留时间进行所有后续的亚细胞PHOTON实验。


PHOTON方法的可行性验证。

图片来源:Nature communications





PHOTON在组织水平的应用


为了验证PHOTON在组织水平捕获细胞转录组的能力,研究团队选择了小鼠卵巢中的颗粒细胞(GCs)作为目标。通过PHOTON方法进行了约600个GCs的光切割,并生成了PHOTON库。结果显示,已知的GC标志物如Inha、Nr5a2和Serpine2在PHOTON数据集中高表达,而卵巢中其他细胞类型的标志物则没有高表达(图B)。与公开GC RNA-seq数据集进行比较,结果显示,PHOTON捕获的基因数量显著多于公开数据集,且PHOTON数据与Slide-seqV2数据之间的高度相关性进一步证明了其准确性。综上所述,这些数据表明,PHOTON可以以空间分辨的方式准确捕获组织内靶细胞类型的转录组信息。


PHOTON捕获小鼠卵巢中的颗粒细胞(GCs)的空间转录组。

图片来源:Nature communications





PHOTON在亚细胞水平的应用


研究团队还验证了PHOTON在亚细胞水平捕获RNA信息的能力。研究团队开发了一个流程可自动识别和光切割HeLa核仁中的cDNA分子(图A)。通过PHOTON方法,成功识别了核仁中富集的RNA种类,包括非编码RNA的rRNAs和小核仁RNA(snoRNAs)。此外,PHOTON还发现了与核仁相关的长链非编码RNA RMRP(图B),与之前的发现一致。接下来,研究团队将PHOTON应用于线粒体。通过使用MitoTracker可视化线粒体,PHOTON流程成功捕获了线粒体中cDNA分子,并发现许多线粒体基因在线粒体中显著富集。


研究团队将PHOTON应用于应激颗粒(SGs),一种无膜的细胞质mRNA-蛋白质组装体。通过PHOTON方法,研究团队成功捕获了SGs中的RNA内容,并与公开数据集进行了比较。结果显示,PHOTON数据与公开数据集之间存在显著重叠,但也发现了一些差异,这可能是由于传统SG纯化方法的特异性较低所致。总之,这些结果表明PHOTON可以准确地测定亚细胞区室的RNA含量。


PHOTON 捕获亚细胞区室内的转录组信息。

图片来源:Nature communications





PHOTON揭示mRNA招募到SGs的机制


研究团队以SGs为模型,探讨了mRNA翻译效率、转录长度以及m6A修饰在mRNA招募到SGs中的作用。通过PHOTON方法,他们发现被SGs富集的转录本往往具有较低的翻译效率,且转录本长度与SGs富集程度之间存在正相关关系(图A)。此外,作者还发现m6A修饰在mRNA招募到SGs中起重要作用,尤其是在长转录本中。通过抑制METTL3(一种m6A甲基转移酶),研究团队发现m6A修饰的减少显著降低了mRNA在SGs中的长度依赖性的富集(图D)。总之,这些结果表明转录物长度和SG富集之间的相关性至少部分是由m6A修饰介导的。


PHOTON 揭示了 m6A 在 mRNA 招募进入SGs中的功能作用。

图片来源:Nature communications





总结与讨论


作者提出了PHOTON,一种结合高分辨率成像和高通量测序的方法,以实现亚细胞分辨率的空间转录组分析。作者证明了PHOTON是一种多功能工具,可以准确地在组织水平上原位捕获目标细胞类型的转录组,如卵巢中的颗粒细胞,以及亚细胞区室(如核仁、线粒体和应激颗粒)内的RNA含量。利用PHOTON,作者还揭示了m6A修饰在mRNA招募到应激颗粒中的功能作用。这些结果共同表明,PHOTON有潜力揭示不同尺度上空间和转录组信息之间的联系。


未来,随着技术的不断进步和方法的持续优化,PHOTON有望在更广泛的生物学和医学研究领域发挥重要作用。例如,它可以用于研究不同疾病状态下细胞转录组的空间变化,为疾病的诊断和治疗提供新的靶点和策略。同时,结合其他高通量技术,如单细胞测序和表观基因组测序,PHOTON将进一步推动我们对生命科学的深入理解。

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