流式细胞分选实验设计

John

思考题：根据自己专业方向或研究课题内容设计细胞分选实验方案，如多色标记样品中3-4种细胞分选，包括试剂订购、实验对照管设计、样品制备过程、分选上机前的准备、画出流式分析图、并圈门指出哪些是要分选的细胞群，需要做几路分选收取目的细胞？如何做纯度分析？
仪器选择
BD FACS Aria SORP(Special Order Research Product) 6激光18参数
试剂订购

抗体名称	Source	克隆号	稀释度
Anti-mouse CD4-APC	BD	1：400
Anti-mouse   CD25-PE-Cy7	BD	1：400
Anti-mouse   CD44-Pacific blue	BD	1：400
Anti-mouse   CD62L-APC-Cy7	BD	1：400
anti-CD62L-FITC	BioLegend	104406	Use at   1:100
anti-CD25-PE	BioLegend	102008	Use at   1:400
anti-CD4-PerCP	BioLegend	100434	Use at   1:1000
anti-CD44-APC	BioLegend	103012	Use at   1:500

对照管设计

阳性对照	空白对照	同型对照	单阳对照	FMO	试验样品
阳性样本，可以没有，1管	blank,不染色，1管	PE-IgG,APC-IgG,Percp-IgG，FITC-IgG混合一个管中。	分别只染一个颜色，4管	荧光减一，可以不做，4管	染所有荧光素

样品制备




获取细胞悬液（磁珠富集）→荧光抗体染色→调整细胞浓度（1~10 X 106 cells/ml）→过滤细胞→移入流式管→避光置冰上运至分选室→上机检测并设定分选条件→分选细胞→上机回测，检测纯度。
分选上机前准备
1、单细胞悬液样品（推荐使用0.1-1.0%BSA-PBS溶液重悬样品），上机前使用300目滤网过滤（推荐BD滤网），禁止使用含血清的培养基或PBS溶液。上机前务必去除样品中之细胞团块，过滤以免管路堵塞。
2、无菌制备，避免样品带菌对设备造成污染，进而影响其他用户的无菌分选实验。
3、根据您的样本种类和选择的荧光标记物，与仪器管理人员沟通确认所使用荧光滤光片和喷嘴直径。
若欲分选GFP、RFP等单色基因转染的样品，需提供未经转染的相同细胞为对照组标本，以作为分选前机器校正用。若以多种荧光染色进行分选，需提供各种单一荧光染色的标本作为分选前仪器校正用。
4、另需要准备：收集管或收集板（可以加入少量培养基或buffer），上样缓冲液或者PBS（可能需要稀释样品）。
浙大生科版本：
a） 保证样本的无菌状态，因为分选得到的细胞还要继续培养；
b） 不能使用固定剂固定细胞，因为活细胞经固定剂处理后即死亡；
c） 保证上机样品为单细胞悬液；
d） 准备充足的细胞；
e） 建议分选上样管中的缓冲液使用含2% FBS的PBS，普通培养基中的酚红可能会干扰分选；若用培养基的话，颜色不能太深，血清浓度不能超过2%，否则粘性太大影响分选。
f） 如细胞分选后需再次培养，请准备含血清的收集管，在分选前交操作员。建议在5ml离心管中加入1-2ml血清及其它必需组分，保证分选完毕时血清浓度大于5%，（建议使用含20%FBS的DMEM）；
g） 如要分选GFP等转染的样品，请提供未经转染的相同细胞为阴性对照；
h） 如要做多重荧光染色标本的分选，请提供各种单一荧光染色的标本（如有光谱重叠，需要做荧光补偿调节）；
i） 如要去除死细胞，在不影响后续实验前提下，可以加入7-AAD或是PI；
j） 快速简便的样本处理有利于分选：处理好的样本尽快上机，分选好的细胞尽快下一步实验，如果要分选多个样本，建议一次处理一个，估计可能的上机时间后，再处理第二个样本
画图圈门



1路分选收取目的细胞，纯度分析
Purity=分选得到的目的细胞/分选得到的总细胞，取少量分选出的目的细胞再次上机分析，分析目的细胞占全部细胞的百分比

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