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[分享] 分子克隆实验中,酶切和连接如何把握酶、载体和片段的用量?

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发表于 2024-10-20 19:03 | 显示全部楼层 |阅读模式
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发表于 2024-10-20 19:03 | 显示全部楼层
在肿瘤细胞功能实验中,常见的实验包括细胞增殖、迁移和侵袭等。上一期介绍细胞划痕实验。本期重点学习另一种实验方法——细胞克隆形成实验,用于检测细胞的增殖能力。
实验原理

细胞克隆形成实验是一种重要的技术方法,用于评估细胞的增殖能力、侵袭性以及对杀伤因素的敏感性等。
当单个细胞在体外连续增殖达到6代以上时,其后代形成的细胞群体被称为集落或克隆。
细胞克隆形成率即细胞接种存活率,是指接种细胞后贴壁的细胞成活并形成克隆的数量。
贴壁后的细胞不一定每个都能增殖和形成克隆,而形成克隆的细胞必为贴壁和有增殖活动的细胞。
克隆形成率反映了细胞群体的依赖性增殖能力这两个重要特征。


实验目的

1)通过对细胞处理后在细胞培养板上的克隆形成能力来提示处理后细胞的增殖能力;
2)评价不同杀伤因素,如药物或基因等对肿瘤细胞增殖能力或群体依赖性的敏感性;
3)评价在体内成瘤性,癌细胞不一定都可以在体内成瘤,但若体外克隆能力越强,即表明体内成瘤性越强,算是模拟体内成瘤的体外实验。
克隆形成实验分类与流程

克隆形成依据采用的培养介质不同,分为平板克隆软琼脂克隆两类。
平板克隆形成(Colony formation):本方法应用于贴壁生长的细胞和正常在培养基中培养的细胞。
1.平板克隆实验
6孔板
细胞处理:将处于对数生长期的细胞用胰酶消化,并重悬成细胞悬液,然后进行计数;
细胞接种:将确定数量的细胞接种到6孔板中的各实验组,每孔接种400-1,000个细胞;
培养观察:继续培养细胞至14天或大多数克隆中的细胞数超过50个,每隔3天更换培养基并观察细胞状态;
固定与染色:克隆完成后,拍照记录细胞形态,然后用PBS洗涤细胞,加入4%多聚甲醛固定细胞30-60分钟,再次洗涤;
染色和拍照:加入结晶紫染液染色细胞10-20分钟,再次用PBS洗涤细胞,晾干后用数码相机进行拍照(整个板和每个孔分别拍照)。
平皿
细胞处理:取对数生长期的细胞,用0.25%胰蛋白酶消化并吹打成单个细胞,然后悬浮在完全培养基中备用;
细胞接种:每组细胞悬液按照梯度倍数稀释,每组分别接种100个细胞到含有10ml 37℃预温培养液的皿中,轻轻转动确保细胞均匀分散;
培养观察:将培养皿放置在37℃、5% CO2和饱和湿度的细胞培养箱中培养2-3周;
克隆观察:当出现肉眼可见的克隆时,停止培养。用PBS小心洗涤细胞2次;
固定和染色:加入适量的固定液固定细胞,然后用染色液染色;
洗涤和干燥:用流水缓慢洗去染色液,使细胞干燥;
克隆计数:在带网格的透明胶片上,用肉眼计数可见克隆,或在低倍显微镜下计数大于10个细胞的克隆数;
统计与分析:计算克隆形成率,克隆形成率=(克隆数/接种细胞数)*100%。
2.软琼脂克隆实验
软琼脂克隆形成(Soft agar colony formation)又称为非锚定依赖性生长实验(Anchorage-independent assay),利用软琼脂作为培养介质,使细胞在悬浮状态下生长。在这种实验中,恶性肿瘤细胞具有贴壁生长和悬浮生长的能力,通过软琼脂中形成克隆的能力反映了其恶性程度,因此可以用于细胞分化的基础研究以及评估临床肿瘤治疗的疗效等方面。
配制1.2%和0.7%琼脂,高压灭菌;
将1.2%琼脂与2×培养基混合,铺入6孔板底部,37°C孵育30分钟使其凝固;
将单细胞悬液与0.7%琼脂混匀,加入6孔板作为上层胶,每孔1.5ml。加入培养基后,每3天更换一次;
孵育2-3周后,使用显微镜观察克隆的大小,并拍照。如果拍摄整个孔,可在每孔加入200μl氯化硝基四氮唑蓝(NBT)染色,37°C过夜后拍照;
统计与分析:计算克隆形成率,克隆形成率=(克隆数/接种细胞数)*100%。
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文章来源:恒意赛生物公众号,更多生物前沿信息请关注“恒意赛”公众号查看!
原文链接:细胞克隆形成实验
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发表于 2024-10-20 19:04 | 显示全部楼层
还是计算一下为好。最简单朴实的办法是run DNA胶,用marker亮度对应着估算样品的浓度。缺点是不太准确。有条件用机器测一下浓度再连接。
酶的量根据说明书的活性效率去计算也还比较方便。
不过实际操作中可能由于载体由于比较珍贵,又没有机器可以测浓度,所以浓度不清楚的话设梯度就好了。酶切产物:载体=3:1~9:1。但是酶的用量还是好说的,因为就算酶也不够,就给反应时间设置长点,好解决。一般大家本着深怕切不干净的原则加的酶量,3小时就可以了。不过更谨慎的时候要注意一下甲基化问题。
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发表于 2024-10-20 19:05 | 显示全部楼层
真的感觉没太大关系,现在轮转的实验室师姐做实验粗犷得很,压根不算比例,只算体积,比如每次都是载体半微升片段4微升,都不管浓度,每次都好好的都能长出菌落╮(╯_╰)╭
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发表于 2024-10-20 19:05 | 显示全部楼层
泻药。一般载体跟片段的摩尔比1:3到1:10之间,但是有些也不能这么算,片段太短的话,片段可以多加一些。有些实验室连接喜欢载体加的少,有些实验室喜欢加 的多....这个都是老板传下来的。
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发表于 2024-10-20 19:05 | 显示全部楼层
你购买的连接酶,内切酶等都是有说明书的,或者你上购买厂家的官网下载使用说明,上面都有非常规范的使用方法。这个东西没有那么严格,用的多点少点,并不会对实验成功与否产生重大的影响。
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