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dCas9(dead Cas9)是Cas9蛋白的突变体,即因Cas9的RuvC1和 HNH两个核酸酶活性区域同时发生突变产生,其剪切酶活性丧失,只保留了由gRNA引导进入基因组的能力。目前,CRISPR-dCas9系统已被广泛应用于基因调控、基因组成像、表观遗传调控等方面。
Sp-dCas9蛋白RuvC1 ( D10A )和HNH ( H841A )结构域突变,核酸酶功能丧失(Beyond editing: repurposing CRISPR–Cas9 for precisiongenome regulation and interrogation)
CRISPRi
dCas9可以结合目标基因组DNA序列,产生空间位阻,阻止其他DNA结合蛋白(如内源性转录因子和RNA聚合酶II)的活性,从而干扰基因表达(CRISPR interference,CRISPRi)。在细菌中,使用基于dCas9的CRISPRi方法可以高效抑制基因表达,特异性高、脱靶率低,并且可以利用多个sgRNAs同时控制多个基因。在哺乳动物细胞中,将dCas9与强阻遏复合物如Kruppel相关盒融合会诱导其产生更强及更特异性的转录抑制。与Cas9诱导的永久性基因修饰不同,CRISPRi对基因的抑制是可逆的。缺点是dCas9可能会抑制操纵子内的下游基因表达而不是单个基因,仍需要进一步的研究来扩展该方法,以便在全基因组范围内选择性地干扰基因表达。
CRISPRa
CRISPR介导的基因激活称为CRISPRa(CRISPR activation),利用dCas9融合蛋白招募转录激活因子。dCas9与大肠杆菌聚合酶的ω-亚基融合,可将全酶组装在目标启动子上,用于转录激活。在哺乳动物细胞中,将dCas9与VP64或p65激活域(p65AD)融合可以在仅一条sgRNA引导条件下同时激活报告基因和内源性基因。然而,使用多个sgRNA以实现源基因的显著激活仍是必要的。
CRISPRi 和CRISPRa用于转录抑制和激活(Beyond editing: repurposing CRISPR–Cas9 for precisiongenome regulation and interrogation) |
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