数字PCR(Digital PCR, 也可以称为dPCR)是一种核酸定量技术,能够在单分子水平上对DNA或RNA进行绝对定量。与传统的实时定量PCR(qPCR)相比,dPCR具有更高的灵敏度和准确性,因此在生物学研究和临床诊断中得到了广泛应用。本文将分成上下两篇,本篇将详细介绍数字PCR的概念、技术发展历史、实验原理。 数字PCR的概念数字PCR是一种基于PCR的核酸定量技术,也就是本质上它还是PCR,但其反应的过程、数据分析的方法与普通的PCR却有很大区别。数字PCR通过将核酸原始样本分散成数千到数百万个独立的微反应单元,每个单元中的DNA模板可以是单个分子或根本没有DNA分子。然后这数千数万个独立的反应单元同时进行PCR扩增后,通过检测每个单元中的荧光信号来确定目标DNA分子的存在与否,从而实现对目标分子的绝对定量。 图片来源:https://images.app.goo.gl/kZgkxbgQ7TcoUt7b6 技术发展历史数字PCR的概念最早可以追溯到1990年代。1992年,Sykes等人首次提出了通过样品稀释和泊松分布数据处理来定量PCR产物的方法,这是数字PCR的雏形。 1999年,Vogelstein和Kinzler首次提出了数字PCR的概念,并展示了其在检测低频突变方面的潜力。此后,数字PCR技术经历了快速发展,特别是在微流控技术和液滴生成技术的推动下,dPCR逐渐成为一种成熟的技术。 图片来源:https://images.app.goo.gl/w8f2ScNSjFe3cPmQ6 2006年,Fluidigm公司发布了第一个基于芯片的商品化数字PCR系统。2011年,Bio-Rad公司推出了基于液滴技术的QX100系统,进一步推动了dPCR技术的普及。近年来,多家公司相继推出了各种高性能的dPCR仪器,使得这项技术在科研和临床应用中得到了广泛应用。 实验原理1. 样本分散数字PCR的核心步骤是将样本分散成大量的独立微反应单元。常用的分散方法包括: ● 滴式dPCR(Droplet Digital PCR, ddPCR):利用微流控技术将样本分散成数万个液滴,每个液滴作为一个独立的PCR反应单元。 ● 片式dPCR(Chip-based Digital PCR, cdPCR):利用微阵列芯片将样本分散成数万个微孔,每个微孔作为一个独立的PCR反应单元。 无论哪一种分散方法,其核心思想就是要尽可能把样本中的每一个核酸分子分开,然后单独进行反应+单独检测其信号。 2. PCR扩增在每个独立的微反应单元中进行PCR扩增。如果单元中含有目标DNA分子,PCR扩增会产生荧光信号;如果单元中没有目标DNA分子,则不会产生荧光信号。这是数字PCR能做到绝对定量的决定性条件,就像是把混杂在一起的一堆零件,逐个分开,并逐个检查,这样得到的结果会比常规的qPCR要准确得多。 可能你会问,qPCR不也可以做绝对定量吗? qPCR提供的其是相对定量结果,即目标DNA分子的数量相对于一个已知标准品的数量。这意味着需要预先制备标准曲线,这增加了实验的复杂性。标准曲线的制备需要精确的已知浓度标准品,且标准品的质量和稳定性直接影响定量结果的准确性。 而且,qPCR在扩增初期可能会受到非特异性扩增、引物二聚体形成等背景信号的干扰,这些背景信号会影响基线的设定和阈值的选择,进而影响Ct值的准确性。 图片来源:https://images.app.goo.gl/3tbkdDuUJHB3Vhno6 3. 信号检测扩增结束后,通过检测每个单元中的荧光信号。根据荧光信号的有无将单元分为阳性(含有目标DNA分子)和阴性(不含有目标DNA分子)。 4. 定量计算利用泊松分布计算每个单元中目标DNA分子的平均数,从而推算出原始样本中的目标DNA分子的绝对浓度。泊松分布公式为: 其中,λ 是每个单元中目标DNA分子的平均数,可以通过阳性单元的比例 p 计算得到 λ=−ln(1−p)。根据阳性单元的比例和泊松分布公式,计算出每个单元中目标DNA分子的平均数,再乘以单元总数,得到原始样本中的目标DNA分子的绝对数量。 对这个感兴趣的同学可以详细阅读下面的资料(来源于网络) 下一篇我们将介绍数字PCR的实验应用,以及近年来的研究方向和热点,敬请期待。 |